Среди всех эндоскопических методов исследования бронхоскопия давно занимает особое место, являясь не только одним из первых диагностических методов, но и важнейшим и эффективным способом лечения больных хроническими воспалительными и нагноительными заболеваниями легких. Последовательная разработка прямых методов исследования гортани, трахеи и бронхов началась с момента внедрения прямой ларингоскопии в 1884 г. Kirstein. На основании углубленных анатомических исследований Killian доказал, что бронхи, имеющие плотный хрящевой скелет, менее ранимы при эндоскопии, чем мягкие стенки пищевода. Вместе со своими учениками Brunnings и Eicken Killian изобрел упрощенный бронхоскопический прибор, который был в дальнейшем значительно усовершенствован. Кроме того, ими была детально разработана техника и методика бронхоскопии (цит. по Еловой М. Я.). Первым бронхоскопическим вмешательством Киллиана было извлечение инородного тела (куска кости) в 1897 г. В 1904 г. Jackson написал первую монографию о трахеобронхоскопии, в которой он называет Killian отцом бронхоскопии. Термин «бронхоскопия» также предложил Killian. На основании обобщения литературных данных и собственных наблюдений автор подчеркивает роль бронхоскопии в распознавании и извлечении инородных тел из трахеи и бронхов. В 1911 г. В. Д. Соколов на основании собственных наблюдений привел данные об успешном применении бронхоскопии при лечении больных абсцессом легкого.

В 1924-1926 г. г. М. Ф. Цитович, В. К. Трутнев, А. Г. Лихачев и др. также опубликовали работы по применению бронхоскопии с лечебной целью при различных заболеваниях бронхов и легких (цит. по Еловой М. М.). Таким образом, приоритет внедрения бронхоскопии в клинику внутренних болезней принадлежит русским врачам.

Как показал многолетний опыт применения эндоскопии в пульмонологии - единичные курсы лечебных бронхоскопий эффективны при пневмонии, абсцедирующей пневмонии или абсцессе легкого, а при обструктивной болезни легких необходимо проводить лечебные бронхоскопии курсами. Еще в 1956 г. Soulas и Mounier-Kuhn разделили курс лечебной бронхоскопии на 3 этапа. Первый этап - пробное лечение, второй этап - лечение для закрепления, третий этап - лечение для поддержания.

Основными лекарственными веществами, которые используют во время лечебных бронхоскопий, являются антисептики, антибиотики, муколитики и иммуномодуляторы.

Самым лучшим из антисептиков была признана фурагина калиевая соль - один из наиболее распространенных препаратов нитрофуранового ряда. Готовят 0, 1% раствор фурагина калиевой соли на изотоническом растворе хлорида натрия. Диоксидин - антисептик, производное хиноксолина, оказывает выраженное антибактериальное действие. Готовят 0, 1% или 0, 2% раствор диоксидина на 2% растворе гидрокарбоната натрия. Санирующий раствор готовят непосредственно перед употреблением. Перед введением в бронхиальное дерево его обязательно подогревают до температуры 36-37°. На одну санацию расходуют от 60 до 140 мл санирующей смеси.

Санационную бронхоскопию начинают с удаления содержимого из трахеобронхиального дерева с помощью отсоса. После этого промывают наиболее пораженные бронхи раствором антисептика. Одномоментно вводят не более 20 мл санирующей смеси с последующей аспирацией ее с помощью отсоса. Лечебную бронхоскопию заканчивают введением муколитика и/или антибиотика.

Слизь, вырабатываемая бронхиальными клетками, состоит из гликопротеидов, сульфомуцинов и воды; она содержит большое количество сульфгидрильных групп, способных формировать связи друг с другом с образованием трехмерной мукоидной структуры. Эти связи, называемые «дисульфидными мостиками», очень прочны и могут быть разорваны только восстановителями.

При патологических состояниях формируется повышенное количество дисульфидных мостиков, что приводит к увеличению вязкости и эластичности бронхиального секрета и повышает риск развития инфекции в скоплениях секрета. Впоследствии образуется гнойная мокрота.

В числе первых лекарственных средств, влияющих на реологические свойства бронхиального секрета, применяли ферментные препараты - трипсин, химотрипсин, рибонуклеазу, дезоксирибонуклеазу. Препараты вводили в виде ингаляций или эндобронхиальных инсталляций. Обычно значительное разжижение мокроты и улучшение ее отхождения наблюдалось к 5 - 7-му дню лечения, курс составлял 10-15 дней. В настоящее время применение протеолитических ферментов, особенно в лечении

больных хронической обструктивной болезнью легких, представляется нецелесообразным вследствие возможного развития бронхоспазма вплоть до астматического статуса, увеличения склонности к кровохарканью, аллергическим реакциям и усилению деструкции межальвеолярных перегородок при дефиците альфа 1-антитрипсина.

В настоящее время при заболеваниях органов дыхания, сопровождающихся образованием очень вязкой, трудно отделяемой мокроты слизисто-гнойного или гнойного характера, применяются лекарственные средства, известные как муколитики или бронхосекретолитические препараты.

Одним из наиболее эффективных препаратов этой группы является N-ацетилцистеин (флуимуцил) - это N-ацетиловое производное естественной аминокислоты L-ацетилцистеина. Флуимуцил - это препарат, оказывающий прямое муколитическое действие; он воздействует на образование слизи путем разрыва дисульфидных мостиков макромолекул мукопротеина, присутствующих в бронхиальном секрете. Это фармакологическое действие связано с наличием в молекуле флуимуцила свободной сульфгидрильной группы, делающей его биологически активным препаратом. В результате воздействия флуимуцила образуются молекулы меньшего молекулярного веса, и происходит разжижение слизи, поскольку препарат уменьшает ее вязкость. Воздействие флуимуцила на вязкость и эластичность слизи оценивалась in vitro на материале трахеобронхиального секрета животных, а также в исследованиях больных различными заболеваниями легких с применением различных методов. Эти исследования показали, что флуимуцил эффективно уменьшает вязкость и эластичность слизи, причем существует взаимосвязь между дозой препарата и интервалом времени, предшествующим реакции. Постепенное повышение концентрации флуимуцила приводит к более выраженному и быстрому уменьшению вязкости. Исследования с применением муциновых моделей выявили постепенное уменьшение вязкости и эластичности слизи при введении возрастающих концентраций флуимуцила. Активность ресничек эпителия дыхательных путей зависит от степени вязкости секрета, покрывающего эпителий. Оптимальная вязкость в сочетании с адекватной подвижностью ресничек способствуют правильной и эффективной элиминации слизи.

Исследования, проведенные на животных, показали, что флуимуцил повышает мукоцилиарную активность. Это благоприятное воздействие на мукоцилиарный транспорт объясняется улучшением деятельности ресничек и приводит к более эффективной элиминации слизи и меньшей степени ее адгезии к эпителию.

Лечение флуимуцилом приводит к значительному снижению активности эластазы - как в бронхоальвеолярном секрете, так и в плазме крови - что свидетельствует о способности данного препарата предотвращать разрушение легочного эластина, обусловленное хроническим воспалительным процессом.

Передача окислительно-восстановительных сигналов - это часть основных механизмов воспаления, например, индукции цитокинов, пролиферации, апоптоза и генной регуляции с целью защиты клеток. Оксиданты действуют как медиаторы передачи сигналов. Было показано, что тиолосодержащие восстанавливающие агенты, в том числе флуимуцил, подавляют активацию NFkB, контролирующего клеточные гены, ответственные за внутриклеточные адгезионные молекулы в интактных клетках. Кроме того, было показано, что флуимуцил подавляет экспрессию молекулы адгезии-1 клеток сосудов (VCAM-1) в эндотелиальных клетках человека.

Увеличивается количество данных, показывающих, что оксидативный стресс играет важную роль в развитии различных заболеваний человека. Источник стресса может быть внутренним (например, активированные клетки воспаления, клетки с окислительно-восстановительным циклом ксенобиотиков) или внешним (например, табакокурение).

Флуимуцил может оказывать прямой антиоксидантный эффект благодаря тому, что он является носителем свободной тиольной группы, способной взаимодействовать с электрофильными группами свободных радикалов кислорода (реактивных кислородных частиц - РКЧ), Взаимодействие с РКЧ приводит к промежуточному образованию тиольных радикалов; основным клеточным продуктом является дисульфид флуимуцила. Флуимуцил оказывает непрямое антиоксидантное воздействие, связанное с тем, что он является предшественником глютатиона и защищает эпителий дыхательных путей от агрессивного воздействия токсичных веществ, предотвращая, таким образом, повреждения легочной ткани. Глютатион - это трипептид, состоящий из глютаминовой кислоты, цистеина и глицина. Этот трипептид является основным фактором защиты от воздействия внутренних токсических агентов (связанных, например, с аэробным дыханием клеток и обменом веществ в фагоцитах) и внешних агентов (например, окиси азота, окиси серы и других компонентов табачного дыма, а также веществ, загрязняющих воздух). Сульфгидрильная группа цистеина оказывает нейтрализующее воздействие на эти агенты. Токсические агенты вызывают поражения любых тканей, однако эпителий бронхов и альвеол легких в связи с его расположением, анатомией и физиологией особенно склонен к возникновению поражений, вызываемых токсическими веществами.

Существует ряд заболеваний (острый респираторный дистресс-синдром, ХОБЛ, рак легкого, интерстициальные заболевания легких, муковисцидоз, бронхиальная астма), при которых на поверхности эпителия дыхательных путей присутствует избыток токсических агентов, приводящий к нарушению равновесия между глютатионом и токсическими агентами в сторону уменьшения количества глютатиона. В этих случаях развивается поражение эпителия дыхательных путей, называемое «оксидативным стрессом». Считается, что оксидативный стресс играет важную роль в патогенезе различных заболеваний легких. Нарушение равновесия между оксидантами и антиоксидантами обусловлено повышенным количеством оксидантов и/или недостаточностью антиоксидантной системы. РКЧ присутствуют в легких в норме и играют важнейшую роль в их функционировании. Кроме того, в легких имеется развитая система внутри- и внеклеточных антиоксидантов. Глютатион синтезируется преимущественно в печени (выполняющей роль депо глютатиона) и в легких, однако он распределяется во всем организме. Синтез осуществляется в цитоплазме клетки в два отдельных ферментативных этапа. На первом этапе осуществляется соединение глютаминовой кислоты и цистеина под воздействием гамма-глютамилцистеинсинтетазы, а на втором этапе - добавление глицина к дипептиду гамма-глютамилцистеину под действием глютатионсинтетазы с образованием глютатиона. Флуимуцил выполняет роль предшественника глютатиона, поскольку он легко проникает в клетки и легко подвергается деацилированию с образованием цистеина. Наличие аминокислот для использования в синтезе глютатиона является основным фактором регуляции синтеза глютатиона. Цистеин содержится в клетках в меньшем количестве по сравнению с глютаминовой кислотой и с глицином. Таким образом, синтез глютатиона зависит от наличия цистеина. Уровень глютатиона можно повысить путем дополнительного введения цистеина. Однако возможность введения активной формы цистеина - L-ацетилцистеина - отсутствует из-за низкого уровня всасывания в кишечнике, низкого уровня растворимости в воде и быстрого преобразования в процессе обмена веществ в печени.

Эти недостатки преодолеваются при использовании флуимуцила, в котором радикал ацетил соединен с аминогруппой. Таким образом, появляется возможность вводить такое количество цистеина, которое необходимо для поддержания адекватного уровня глютатиона в легких.

Во время лечебной бронхоскопии применяют 2 мл 5% раствора флуимуцила (N-ацетилцистеина), который вводят в бронхиальное дерево в конце санации. Действие препарата начинается через 30 мин после введения и сохраняется до 2 - 4 ч. При этом происходит разжижение мокроты, она легче отходит и в большем количестве, чем до санации, поэтому создается впечатление о значительном увеличении объема мокроты. На самом деле флуимуцил не стимулирует выработку секрета, а лишь разжижает его. Флуимуцил обладает слабым запахом сероводорода, поэтому его нужно с осторожностью применять у больных бронхиальной астмой из-за опасности развития бронхоспазма, однако, за более чем 5-ти летний опыт использования препарата не отмечалось подобного осложнения. Флуимуцил при инстилляциях не следует смешивать с антибиотиками, так как при этом происходит взаимная инактивация препаратов. Поэтому, например одна из фирм (фирма Zambon) выпустила уникальный препарат - флуимуцил антибиотик ИТ, который состоит из антибиотика тиамфеникола и N-ацетилцистеина. Препарат обладает широким спектром антибактериальной активности. Он активен в отношении многих штаммов устойчивых к беталактамным антибиотикам, в отношении внутриклеточных возбудителей (Legionella, Chlamidia, micoplasma), а также в отношении штаммов Staphylococcus aureus VISA и многих устойчивых штаммов S. Aureus. Еще одним преимуществом антибиотика является его высокая биологическая доступность и высокий коэффициент проникновения в легочную ткань. Другой важной особенностью является то, что он единственный антибиотик в классе хлорамфениколов, не имеющий гематологической токсичности. Таким образом, флуимуцил антибиотик ИТ остается среди антибиотиков первого выбора в терапии респираторных инфекций. Антибиотик вводят в конце санационной бронхоскопии в количестве 500 мг, разведя его предварительно в 5 мл воды для инъекций.

Отсюда следует, что бронхоскопия с самого начала своего существования стала важнейшим лечебно-оперативным эндоскопическим методом у больных с заболеваниями бронхо-легочной системы.

Бронхоскопия – это современное диагностическое исследование слизистых оболочек трахеи и бронхов с помощью специального оптического прибора – бронхоскопа. Это единственный метод, позволяющий непосредственно оценить внутреннюю поверхность бронхов, изучить их конфигурацию, рельеф слизистой оболочки и её сосудистый рисунок, а при обнаружении патологически измененного участка слизистой - произвести биопсию для последующего морфологического анализа. Бронхоскопия является также важнейшим и эффективным способом лечения больных с хроническими воспалительными и гнойными заболеваниями легких.

Ларингоскопия – это метод визуального исследования гортани. Специалистом осматриваются передняя и задняя части гортани, складки преддверия и истинные голосовые складки. Исследование чаще всего выполняется ЛОР-врачом при помощи гортанного зеркала (непрямая ларингоскопия) либо ригидного ларингоскопа (прямая ларингоскопия). Однако при опухолевых поражениях гортани осмотр с помощью ригидных инструментов бывает затруднён из-за ограниченных условий обзора, угрозы повреждения опухоли и кровотечения, а также из-за болевых ощущений пациента, которыми неминуемо сопровождается это исследование. В отделении эндоскопии НМИЦ онкологии им. Н.Н.Петрова для выполнения ларингоскопии и бронхоскопии применяется цифровая видеосистема Olympus EVIS Exera III с гибким видеоэндоскопом, диаметр которого составляет не более 5 мм. Это позволяет безопасно выполнить полноценный осмотр даже наиболее труднодоступных участков гортани при минимальных негативных ощущениях у пациента, а также произвести прицельную биопсию опухоли, необходимую для постановки диагноза.

Показания для проведения плановой бронхоскопии:

• Подозрение на опухоль трахеи и бронхов
• Кровохарканье
• Подозрение на наличие инородного тела в просвете дыхательных путей
• Ожоги нижних дыхательных путей
• Пневмония с затяжным течением, рецидивирующие пневмонии
• Деструктивная/аспирационная пневмония, абсцесс легкого
• Хронические заболевания бронхов и легких невыясненной причины
• Признаки диссеминированных патологических процессов на рентгене (мелких очагов, кист, полостей)
• Длительная одышка (при исключении бронхиальной астмы и сердечной недостаточности)
• Немотивированный кашель, продолжающийся свыше 1 месяца

Противопоказания к проведению исследования:

В настоящее время врачи снижают количество противопоказаний к бронхоскопии. Но при некоторых патологиях обследование может принести больше вреда, чем пользы.

• Обострение хронической обструктивной болезни легких (ХОБЛ) и бронхиальной астмы (проведение процедуры в этот момент может усилить спазм бронхов и усугубить состояние больного).
• Инфаркт миокарда и инсульт, перенесенные менее 4 недель назад (стресс и спазм сосудов и некоторая нехватка кислорода во время процедуры могут вызвать повторный случай нарушения кровообращения).
• Неконтролируемая аритмия
• Выраженные нарушения свертываемости крови (тромбоцитопения менее 20000)
• Аневризма аорты
• Психические заболевания, такие как шизофрения и эпилепсия (стресс и снижение концентрации кислорода в крови могут спровоцировать приступ судорог)

Подготовка к исследованию

• Исследование проводят строго натощак, полностью исключается прием пищи за 8-10 часов и жидкости за 4–6 часов до начала процедуры. Вечером накануне исследования (до 18:00) - лёгкий ужин. В день исследования от курения следует воздержаться.
• Отменить пероральные антикоагулянты (препараты для разжижения крови) накануне исследования, пауза п/к введения гепарина за 4-6 часов до процедуры.
• На обследование при себе необходимо иметь амбулаторную карту, результаты КТ грудной клетки или описание рентгенограммы легких, полотенце (так как после процедуры возможно непродолжительное кровохарканье). Если Вы страдаете бронхиальной астмой, то не забудьте ингалятор.
• Во время предварительной беседы сообщите врачу об аллергии на медикаменты (особенно если есть аллергия на обезболивающие препараты) и имеющихся у Вас хронических заболеваниях (бронхиальная астма, сердечная недостаточность).

Как осуществляется исследование:

Исследование проводят в положении сидя. При этом нельзя вытягивать вперед голову и выгибать грудную клетку, чтобы аппарат не травмировал слизистую дыхательных путей. С целью местной анестезии непосредственно перед исследованием проводится обработка носовой и ротовой полости 10% Лидокаин-спреем. Он вызывает онемение неба, чувство комка в горле, легкую заложенность носа. Анестезия помогает подавить кашлевой и рвотный рефлекс. В процессе исследования анестетиком поэтапно орошается слизистая гортани, голосовых связок, трахеи и бронхов. Вопреки тревожным ожиданиям большинства пациентов, во время бронхоскопии они совершенно не чувствуют боли.

Трубка бронхоскопа имеет очень маленький диаметр, поэтому дыханию обследуемого она не мешает. Во время продвижения трубки по дыхательным путям в них может ощущаться легкое давление, но выраженного дискомфорта Вы при этом не испытываете. Чтобы снизить рвотный рефлекс в момент введения бронхоскопа, рекомендуем Вам дышать поверхностно и как можно чаще.

После процедуры чувство онемения остается на протяжении получаса. Не рекомендуется курить и принимать пищу на протяжении 2-х часов после завершения процедуры.

Процедура бронхоскопии, выполненная на современном цифровом оборудовании, сопровождается фиксацией полученного материала в виде фото– или видеозаписи, что позволяет проследить изменения состояния слизистой органов в динамике.

О результатах исследования Вам сообщит врач–эндоскопист сразу же после обследования, результаты цитологического исследования будут готовы через 3-4 дня, морфологическое заключение будет готово через 8–12 дней

Дополнительные диагностические и лечебные манипуляции во время бронхоскопии:

• Биопсия слизистой оболочки/новообразования

Важной составной частью диагностической бронхоскопии и ларингоскопии является биопсия. Она выполняется для морфологической верификации процесса и определения его распространенности по бронхиальному дереву. Взятие материала для цитологического и гистологического исследований выполняется несколькими способами, каждый из которых имеет свои показания. Наиболее часто биопсию производят с помошью биопсийных щипцов либо щетки-скарификатора (браш-биопсия). Материал помещают в одноразовый маркированный контейнер, а в случае браш-биопсии – на предметное стекло. Процедура безболезненна для пациента.

• Смыв со стенок бронхов

Материал для бактериологического и цитологического исследований (с целью обнаружения атипичных клеток при периферическом раке легкого, патогенной флоры при пневмониях и бронхитах, а также выявления микобактерии туберкулеза) получают со стенок и просвета бронхов. Если содержимое бронхов скудное, то в начале через канал эндоскопа в просвет бронхов вводят небольшой объем (20-40 мл) изотонического раствора натрия хлорида, а затем аспирируют раствор, смешанный с бронхиальным содержимым, в одноразовый стерильный контейнер.

• Бронхоальвеолярный лаваж

Бронхоальвеолярный лаваж представляет собой дополнительное исследование для установления характера легочного заболевания, при котором в просвет бронхов мелкого калибра вводится значительный объем изотонического раствора хлорида натрия (порядка 120-240 мл). При этом в получаемой при аспирации лаважной жидкости присутствуют клетки не только из просвета самых мелких бронхов, но и альвеол. Диагностический бронхоальвеолярный лаваж показан пациентам, у которых при рентгенографии органов грудной полости обнаружены неясные изменения в легких, а также диффузные изменения. Диффузные интерстициальные заболевания легких (саркоидоз, аллергический альвеолит, идиопатический фиброз, гистиоцитоз X, пневмокониозы, коллагенозы, облитерирующий бронхиолит) представляют наибольшую трудность для клиницистов, так как их этиология часто неизвестна.

Неясные изменения могут быть инфекционной, неинфекционной, злокачественной этиологии. Даже в тех случаях, когда лаваж не является диагностическим, по результатам его можно предположить диагноз, и тогда внимание врача будет сфокусировано на нужных дальнейших исследованиях. Например, даже в нормальной лаважной жидкости высока вероятность обнаружения различных нарушений. В дальнейшем бронхоальвеолярный лаваж потенциально используется в установлении степени активности заболевания, для определения прогноза и необходимой терапии.

• Санация трахеобронхиального дерева

Санация трахеобронхиального дерева - это лечебная мера, позволяющая устранить скопление слизи на пораженных бронхах. Основными задачами санационной бронхоскопии являются воздействие на характер секрета слизистых желез, улучшение дренажной функции бронхов за счет удаления секрета, проведение противовоспалительной терапии. Однократные курсы лечебной санационной бронхоскопии эффективны при пневмонии, нагноившейся кисте легкого, абсцессе легкого, а при хронической обструктивной болезни легких, хроническом обструктивном бронхите, бронхоэктазах, муковисцидозе необходимо многократное курсовое лечение.

Какие могут быть осложнения?

Как правило, данное исследование хорошо переносится пациентами, но иногда возникают потеря или охриплость голоса, боль в горле, а в случае биопсии может наблюдаться кровохарканье. Эти явления носят временный характер. Вас должны насторожить длительное кровохарканье, интенсивная неослабевающая боль в груди, появление отёка на лице и вокруг шеи, тошнота и рвота, а также повышение температуры тела и озноб. При появлении указанных симптомов немедленно обратитесь к врачу.

Прохождение процедур бронхоскопии и ларингоскопии в нашем центре возможно только после предварительной записи в регистрационном журнале (см. раздел Контакты), при наличии на руках результатов КТ грудной клетки или описания рентгенограммы легких.

Бронхоскопия и ларингоскопия выполняются ИСКЛЮЧИТЕЛЬНО под местной анестезией.

На амбулаторном этапе процедура выполняется на платной основе. Оплатить исследование можно в регистратуре поликлиники центра на 1-м этаже.

Направление от других специалистов для прохождения исследования не требуется.

Пути проникновения бактерий:

1. микроаспирация ротоглоточного секрета;

2. аспирация содержимого пищевода/желудка;

3. ингаляция инфицированного аэрозоля;

4. гематогенным путем из отдаленного инфицированного участка;

5. экзогенное проникновение из инфицированного участка (например, плевральной полости); прямое заражение дыхательных путей у интубированных больных от персонала палат интенсивной терапии . Особо следует обратить внимание на последний пункт вышесказанного, т.к. именно при несоблюдении правил санации трахеобронхиального дерева происходит заражение дыхательных путей патогенной микрофлорой.

При санации ТБД обязательно соблюдение следующих правил:

1. пользоваться только стерильными катетерами и наконечниками с гладкими краями;

2. надевать перчатки и использовать пинцет, чтобы удерживать проксимальный конец катетера подведенный к месту отсасывания; диаметр катетера не должен быть больше половины просвета трахеостомической или интубационной трубки; отсасывание не должно продолжаться более 15с;

3. перед санацией увеличивают концентрацию кислорода во вдыхаемой смеси.

Цель : поддержание нормального дыхания через трахеостому, санация трахеобронхиального дерева

Показания: наличие интубационной трубки, трахеостомы.

Оснащение: стерильные: маска, медицинские перчатки, катетеры, марлевые салфетки, салфетки штанишки, ватные тампоны, зонд с нарезкой, внутренняя трахеостомическая трубка, пипетки соответствующего размера, лоток, пинцет; 0.82%-ный раствор фурацилина, 70%-ный спирт, 2%-ный раствор гидрокарбоната натрия (пищевая сода), паста Лассара, теплая теплая кипяченая вода, электроотсос, лоток для отработанного материала, емкость с дезинфицирующим раствором.

Последовательность действий:

1. Катетеры для отсасывания должны быть (стерильными и находиться на специальном столике в растворе антисептика (обычно в растворе фурацилина). Каждый сеанс отсасывания должен производиться отдельным катетером. После использования катетер следует промыть, подвергнуть антисептической обработке и стерилизации.

2. Во время аспирации катетер (при закупорке его густой слизью, корками и пр.) должен промываться с помощью отсоса только раствором антисептика, для этого обычно используется раствор фурацилина, налитый в отдельный сосуд.

3. После каждого отсасывания целесообразно закапывать в трахеостому 1-2 мл антисептика (раствор фурацилина и др)

4. В ближайшие 2-3 дня после наложения трахеостомы должна проводиться общая профилактическая антибиотикотерапия (назначаются макролиды, полусинтетические пенициллины и др.)

5. Строго соблюдение методика проведения аспирации:

· Наружный диаметр отсасывающего катетера должен быть меньше половины диаметра трахеостомической трубки

· Катетер должна быть полужесткими, так как жесткий катетер травмирует слизистую, а мягкий не позволяет осуществить его введение в нижележащие части трахеи и в бронхи, легко слипается во время аспирации

· Длительность одномоментного отсасывания не должна превышать 5 секунд, интервалы между отдельными отсасываниями должно быть не менее 5 секунд

· До и после отсасывания целесообразно обеспечить больному дыхания воздухом, обогащенным кислородом

· Аспирирующий катетер должен вводиться при неработающем отсосе, или с применением специального тройника, одно из отверстий которого в момент катетера открывается, что исключает появления отрицательного давления в катетере, и тем самым, присасывание его конца к стенке трахеи и бронхов, присасывание слизи и смешение ее при продвижении катетера в нижележащие отделы трахеобронхиального дерева, иными словами, нельзя отсасывать мокроту во время введения катетера

· Отсос должен включаться лишь в период аспирации и при извлечении катетера из трахеостомы

· Катетер следует вводить и извлекать из трахеи медленно и осторожно (атравматично)- во времяаспираций необходимо исключить присасывание катетера к слизистой трахеи и брохов, так как это повреждает слизистую оболочку, что увеличивает риск инфекционных осложнений и вызывает развитие рубцов, наименьшая травматичность обеспечивается применением катетеров с боковым расположением отвертсвия и со слепым конусообразным изогнутым концом (катетеры «Тимана»и др)

6. В первые 2 часа после наложения трахеостомы аспирацию из трахеи и бронхов следует проыодить через каждые 20-30 минут, в последующем- через 1-2 часа и реже (но необходтмости).

7. Перед каждым отсасыванием из трахеостомы следует в течение примерно 5 минут проводить перкуссионный и вибрационный массаж трудной клетки, что облегчает удаление мокроты. С этой же целью перед отсасывании в трахеостому можно ввести 10-15 мл изотонического раствора натрия хлорида.

8. При отсасывании из бронхов необходимо использовать эффекты постурального дренажа и приемы, позволяющие вводить катетер поочередно в левый и правый главные бронхи (при введении в левый бронх- поворот головы больного и смещение его трахеи вправо, при введении и правый главный бронх- поворот головы и смещение трахеи влево); во время постурального дренажа следует проводить перкуссионный, вибрационный и иной массаж грудной клетки.

9. Для профилактики инфекционных осложнений следует так же санировать пространство над манжетой, что позволяет проводить трахеостомическая трубка с каналом для аспирации

ОБРАБОТКА ТРАХЕОСТОМЫ

Цель: поддержание нормального дыхания через трахеостому, санация трахеобронхиального дерева

Показания: наличие трахеостомы

Оснащение : стерильные: маска, стерильные перчатки, катетеры, марлевые салфетки, ватные тампоны, зонд с нарезкой, внутренняя трахеостомическая трубка, пипетка соответствующего размера, лоток, пинцет, 0,82%-ный раствор фурацилина, 70%-ный спирт, 2%-ный раствор гидрокарбоната натрия (пищевая сода) паста Лассара, теплая кипяченая вода, электроотсос, лоток для отработанного материала, емкость с дезинфицирующим раствором.

Последовательность действия:

1. Вымыть руки, надеть перчатки, маску

2. Усадить пациента, снять грязную повязку, положить ее в лоток для отработанного материала

3. На зонд с нарезкой намотать вату, смочить ее теплой водой

4. Удалить внутреннюю трубку, протереть ее внутреннюю поверхность ватой на зонде и поместить ее в лоток для отработанного материала

5. Встать сбоку от больного

6. Закапать внутрь наружной трубки теплый стерильный содовый раствор

7. Пипетку поместить в лоток для отработанного материала

8. Ввести катетер в трубку на глубину 10-15см, включить электроотсос и удалить содержимое трахеи, медленно извлекая катетер в течение 15-25 секунд

9. Процедуру повторить 2-3 раза

10. Обработать кожу вокруг стомы фурацилином, осущить салфеткой, наложить пасту Лассара на кожу, под трахеостомическую трубку подвести марлевые салфетки штанишки)

11. Ввести внутреннюю трубку

12. Прикрыть трахеостому влажной двухслойной салфеткой, смоченной 0,02%-ным раствором фурацилина, укрепленной на шее по типу фартук)

13. Фиксирующий бинт провести через левое ушко наружной трахеостомической трубки

14. Провести двойной слой бинта по задней поверхности шеи, ввести бинт в правое ушко наружной трахеостомической трубки, связать концы бинта не шее справа.

15. Провести дезинфекцию предметов ухода

16. Снять перчатки, погрузить в емкость с дезинфицирующим средством, вымыть руки.

9.МАНИПУЛЯЦИЯ «ВВЕДЕНИЕ ВОЗДУХОВОДА»

Введение воздуховода через рот

1. Показания:

a. Полная или частичная обструкция верхних дыхательных путей. b. Сжатые челюсти у больных в бессознательном состоянии или у интубированных пациентов.

c. Необходимость аспирации из ротоглотки.

2. Противопоказания:

a. Переломы челюстей или зубов.

b. Наличие в анамнезе или острый эпизод бронхоспазма.

3. Анестезия: Местное орошение 10% раствором лидокаина для угнетения рвотного рефлекса.

4. Оборудование:

a. Пластмассовый или снабженный мягкой кромкой воздуховод.

b. Шпатель.

c. Электроотсос.

5. Положение: Лежа на спине или на боку

6. Техника:

a. Откройте рот, надавите шпателем на основание языка, выведите язык вперед из глотки.

b. Введите воздуховод в рот вогнутой стороной к подбородку так, чтобы дистальный конец его направлялся, но не достигал задней стенки ротоглотки; фланец воздуховода должен на 1-2 см высовываться из-за резцов.

c. Примените прием выведения нижней челюсти, обеспечивающий подъем языка от стенки глотки.

d. Нажмите на воздуховод и продвиньте его на 2 см в рот так, чтобы его изгиб лег на основание языка. e. Как вариант, воздуховод можно ввести вогнутой стороной к нёбу. После того, как его конец достигнет язычка (в этом случае шпатель не используют); поверните воздуховод на 180° и далее продвиньте по языку. Этот метод не рекомендуется, если у пациента есть шатающиеся зубы или травма полости рта, так как поворот воздуховода может вызвать смещение зубов или усиление кровотечения.

7. Осложнения и их устранение:

a. Развитие бронхоспастической реакции Поддерживайте проходимость дыхательных путей приемом, описанным в разделе А.

b. Тошнота или рвота Поверните голову на бок и проведите аспирацию.

c. Усугубление обструкции дыхательных путей из-за неправильного расположения воздуховода Удалите воздуховод и введите его снова, если в этом будет необходимость.

Введение воздуховода через нос

1. Показания:

a. Обструкция верхних дыхательных путей у пациентов с сохраненным сознанием.

b. Травма зубов или ротоглотки.

c. Неадекватное раскрытие дыхательных путей после введения ротового воздуховода.

2. Противопоказания:

а. Окклюзия полости носа.

b. Переломы носа и основания черепа.

c. Искривление перегородки носа.

d. Коагулопатия.

e. Истечение спинномозговой жидкости из носа.

f. Транссфеноидальная гипофизэктомия в анамнезе. g. Формирование заднего фарингеального лоскута для закрытия краниолицевого дефекта в анамнезе.

3. Анестезия:

a. Визуально оцените степень проходимости ноздрей (относительный размер, наличие кровотечения или полипов) или проведите следующий тест. Необходимо, чтобы пациент выдыхал через нос на небольшое зеркальце или на клинок ларингоскопа. Больший размер пятна конденсации указывает на более проходимую ноздрю.

b. Для обеспечения местной анестезии и вазоконстрикции в носовых путях используйте смесь следующего состава: 10 мг фенилэфрина в 10 мл 2% геля лидокаина.

c. Введите тампон на стержне в выбранную ноздрю и дождитесь наступления местной анестезии.

d. Осторожно последовательно вводите тампоны на стержне глубже в ноздрю, пока три тампона не будут находиться одновременно на уровне задней стенки носа, не причиняя значительных неудобств больному. e. После использования данной методики тампонирования обычно удается провести через полость носа 7.5 мм воздуховод. f. При невозможности использования тампонов, лидокаин-фенилэфриновая смесь может быть введена шприцем непосредственно в полость носа.

4. Оборудование:

a. Ватные тампоны на стержне.

b. Носовые воздуховоды разных калибров (обычно от 6.0 до 8.0 мм)

c. 2% гель лидокаина. d. Фенилэфрин. e. Электроотсос. 5. Положение: Лежа на спине, на боку, сидя.

6. Техника:

a. Осторожно введите воздуховод в нос вогнутой стороной к твердому нёбу. b. Проводите воздуховод в нос под нижнюю раковину, параллельно нёбу.

c. Если встречается сопротивление в заднем зеве, осторожно поверните воздуховод на 60-90° и продолжайте вводить в зев; может помочь также поворот воздуховода на 90° против часовой стрелки с последующим возвращением его в исходное положение после прохода через зев.

d. Если при среднем усилии воздуховод не проходит, используйте таковой на калибр меньше.

e. Если воздуховод не продвигается, извлеките его на 2 см, пропустите через него небольшой катетер для аспирации, затем попытайтесь ввести воздуховод, используя катетер в качестве проводника.

В условиях медицинской организации и на дому встречаются пациенты, у которых мокрота и слизь перекрывают путь движения воздуха, необходимого для дыхания. В ряде случаев эти секреты могут скапливаться в носу, ротовой полости, гортани и трахее.

Если эвакуация секрета из ротовой полости может быть выполнена путём механического опорожнения дыхательных путей салфеткой, которая надета на палец или шпатель, то произвести аналогичное механическое опорожнение носа, гортани и трахеи практически невозможно.

Особенно эта проблема актуальна для пациентов с перенесёнными инсультами и нарушением функции глотания, с иной неврологической патологией, после ряда хирургических вмешательств. В этой связи наиболее правильным будет использование приборов, которые аспирируют (отсасывают) мокроту.

В настоящее время спектр таких приборов достаточно велик. Одним из примеров являются аспираторы серии АТМОС (ATMOS), которые могут использоваться в медицинской организации и дома. Эти аппараты обладают небольшими габаритными размерами и массой, способностью работать от сети или аккумулятора, высокой скоростью аспирации, колеблющейся от 16 до 25 л/мин.

Проведение процедуры аспирации требует специальной и довольно простой подготовки медицинской сестры и/или родственников больного. Целесообразно первые процедуры аспирации у конкретного больного выполнять не одному, а двум медицинским работникам, чтобы иметь возможность предупредить больного о возможных неприятных ощущениях, поддержать и успокоить его, дать возможность адаптироваться.

При необходимости один медицинский работник сможет проводить процедуру аспирации, а второй — измерит пульс, АД, поддержит больного во время манипуляции и т.д.

Причинными факторами, ведущими к увеличению популяции больных с трахеостомами, являются сочетанные травмы полых органов шеи, постинтубационные стенозы гортани и трахеи, различные оперативные вмешательства на органах шеи, злокачественные новообразования верхних дыхательных путей, тяжелые соматические заболевания, нарушающие жизненно важные функции – дыхания и пищепроведения, требующие протезирования дыхательных и пищеварительных путей.

Несмотря на успехи гортаннотрахеальной хирургии, значительное число больных остаются вынуждены использовать трахеостому постоянно из-за невозможности или неэффективности хирургического восстановительного лечения.

Наличие трахеостомы является источником опасности для больного, а при отсутствии надлежащего ухода и медицинского мониторинга может представлять прямую угрозу жизни. У трахеостомированных больных наряду с аспирациями в ряде случаев требуются периодические замены трахеостомических трубок, их очистка.

Назотрахеальная и оротрахеальная аспирация

Цель : освобождение носа, рта и трахеи больного от слизи, мокроты, препятствующих нормальному дыханию.

Показания : нарушение эвакуации слизи и мокроты из дыхательных путей.

Возможные осложнения

Потребуется : вакуум- отсос (аспиратор), стерильный отсасывающий катетер, перчатки (стерильная для руки, которая манипулирует со стерильным катетером), пакет для мусора, защитная маска, защитные очки, одноразовый фартук, халат, раствор натрия хлорида 0,9%, стерильный гель- смазка (например, «Катеджель»), мешок для мусора, при необходимости небулайзер для последующей ингаляции.

• Больной располагается в положении «сидя» или «полусидя» (положение полу-Фаулера), ему объясняется суть проводимой процедуры, даются инструкции о том, как себя вести, обращается внимание, что каждая аспирация занимает не более 10-15 сек и не опасна. При необходимости на время могут быть удалены съемные зубные протезы.

• Попросить больного сделать 5 глубоких вдохов, при возможности — с использованием кислорода.

• На кончик катетера нужно нанести гель-смазку для улучшения прохождения катетера в нос и рот пациента, на вдохе ввести катетер в рот, а позднее — в нос пациента (при затруднении носового дыхания и заполненном слизью рте больной может испугаться, что задохнётся, потому начинают аспирации с полости рта) на глубину не более расстояния от кончика носа до мочки уха этого пациента и включить аспиратор.

• Извлекать катетер с использованием вращающих движений не прекращая аспирации, стараться при этом не касаться нёба, язычка, языка пациента, чтобы не вызвать тошноту и рвоту.

• Проведите аускультацию лёгких, чтобы убедиться, что дыхание проводится во все отделы лёгких. Если у больного с обструктивным заболеванием лёгких появились сухие хрипы, то можно рекомендовать провести ингаляцию через небулайзер раствора бронхолитика.

Трахеостомная аспирация

Цель : освобождение нижней части гортани и трахеи больного с трахеостомой от слизи, мокроты, препятствующих нормальному дыханию.

Показания : нарушение эвакуации слизи и мокроты из дыхательных путей у трахеостомированного больного.

Возможные осложнения : кровотечения из носа или носоглотки, повреждение трахеи, гипоксия, сердечная аритмия (в том числе бради- или тахикардия), удушье, тошнота, рвота, кашель, попадание инфекции в дыхательные пути.

Потребуется : вакуум-отсос (аспиратор), стерильный отсасывающий катетер, перчатки (стерильная для руки, которая манипулирует со стерильным катетером), пакет для мусора, защитная маска, защитные очки, одноразовый фартук, халат, раствор натрия хлорида 0,9%, стерильный гель-смазка (например, «Катеджель»), мешок для мусора, при необходимости небулайзер для последующей ингаляции и манометр для контроля воздуха в манжете трахеостомической трубки.

Алгоритм выполнения манипуляции

• Больной располагается в положении «сидя» или «полусидя» (положение полу-Фаулера), ему объясняется суть проводимой процедуры, даются инструкции о том, как себя вести, обращается внимание, что каждая аспирация занимает не более 10-15 сек и не опасна.

• Медицинский работник или родственник пациента одевает халат и/или одноразовый фартук, одноразовые перчатки, маску, защитные очки.

• Отсасывающий катетер присоединяется к аспиратору, аспиратор устанавливается на мощность отсоса в 80-120 мм рт. ст. или до 0,4 Бар у взрослых и до 0,2 Бар у детей и подростков.

• Закапать несколько капель 0,9% раствора натрия хлорида в трахеостомическую трубку для разжижения секрета.

• Кончик катетера ввести на глубину не более длины трахеоканюли.
• Извлекать катетер с использованием вращающих движений, не прекращая аспирации.
• При необходимости повторить аспирацию, используя другой катетер, чтобы предупредить распространение инфекции.
• Предложите больному прополоскать рот водой или жидкостью для полоскания полости рта.
• После аспирации промыть систему шлангов раствором антисептика.
• Оцените объём аспирата и запишите в температурный лист или дневник наблюдений за больным.

• Проведите аускультацию лёгких, чтобы убедиться, что дыхание проводится во все отделы лёгких. Если у больного с обструктивным заболеванием лёгких появились сухие хрипы, то можно рекомендовать провести ингаляцию раствора бронхолитика через небулайзер, присоединённый к трахеостомической трубке.

• Снимите одноразовый фартук, маску, перчатки, вымойте руки.

Очистка трахеоканюли

Цель : очистка трахеоканюли от слизи, мокроты, крови для ее дальнейшего использования.

Показания : загрязнение трахеоканюли слизью, мокротой, кровью и иными посторонними компонентами, создающими условия для нарушения движения по ней воздуха.

Возможные осложнения

Потребуется : запасная трахеоканюля (на случай повреждения трахеоканюли, подлежащей замене), ёмкость для очистки, ёршик (щётка) для очистки, антисептическое средство, масло или мазь для трахеостомы, кран с проточной водой.

Алгоритм выполнения манипуляции

• Извлеките трахеоканюлю, используя проточную воду и ёршик удалите поверхностное загрязнение.

• Поместите внутреннюю и внешнюю трахеоканюли в ёмкость с моющим антисептическим раствором, оставьте их на 10 мин.

• Ополосните канюли от моющего раствора под струёй проточной воды.
• Обработайте трахеостому маслом или мазью для обработки трахеостомы.
• Установите канюлю в стому.

• При возникновении кровотечения в результате травматизации трахеи за счёт неаккуратных манипуляций целесообразно проконсультировать больного у оториноларинголога. Если кровотечение обильное, то до осмотра специалиста больной укладывается на живот с опущенным головным концом, чтобы препятствовать попаданию крови в бронхиальное дерево.

• При возникновении удушья во время установки трахеостомы целесообразно попросить больного откашляться, чтобы устранить явление закупорки дыхательных путей, если откашливание не приносит позитивного результата, то нужно извлечь внутреннюю канюлю, чтобы проверить её проходимость.

• Вымойте руки.

Замена трахеоканюли

Цель : смена трахеоканюли, которая пришла в негодность.

Показания : непригодность трахеоканюли для дальнейшего использования.

Возможные осложнения : кровотечения из трахеи, повреждение трахеи, закупорка трахеостомической трубки и развитие гипоксии.

Потребуется : трахеоканюля, фиксирующая повязка, стерильные трахеостомические салфетки (1-, 2- или 3-хслойные), шприц объёмом 10 мл, масло или мазь для трахеостомы, 0,9% раствор натрия хлорида, марлевые салфетки.

Алгоритм выполнения манипуляции

• Больной располагается в положении «сидя» или «полусидя» (положение полу-Фаулера), ему объясняется суть проводимой процедуры, даются инструкции о том, как себя вести.

• На первом этапе для обеспечения проходимости дыхательных путей во время смены канюли проводится аспирация дыхательных путей.

• Канюля извлекается. Если она заблокирована, то предпринимаются аккуратные попытки снять блок и извлечь канюлю.

• Трахеостома очищается стерильными салфетками, смоченными в 0,9% растворе натрия хлорида или специальными салфетками для очистки трахеостомы.

• Необходимо проверить надёжность фиксации трахеостомической канюли, чтобы она не выпала из стомы, а была извлечена только при необходимости.

• Для замены канюли под её ушки заводятся стерильные салфетки с Y-образным разрезом. Масло или мазь для обработки трахеостомической трубки располагают на поверхности канюли. Нужно растянуть и удерживать отверстие трахеостомы двумя пальцами, затем ввести канюлю, следуя ее изгибам и соблюдая аккуратность. Закрепить фиксирующие завязки на шее и проверить фиксацию канюли. Фиксирующие канюлю повязки должны быть натянуты между кожей шеи и завязками так, чтобы можно было ввести 1 палец.

• Вымойте руки.

Таким образом, проведение назотрахеальной, оротрахеальной и трахеостомной аспирации с помощью специальных приборов, а также проведение ухода за трахеостомой являются неотъемлемыми навыками медицинской сестры, которым она может обучить родственников больного, осуществляющим уход на дома.

Санационные методы при заболевания легких

Ведущие пульмонологи Ростова — На — Дону

Ануфриев Игорь Иванович пульмонолог — Доцент кафедры фтизиатрии и пульмонологии Ростовского государственного медицинского университета, заведующий отделением пульмонологии Ростовского государственного медицинского университета.

Боханова Елена Григорьевна — Заведующая терапевтическим отделением, кандидат медицинских наук, врач высшей категории, ассистент кафедры пропедевтики внутренних болезней РостГМУ, врач-пульмонолог.

Киртанасова Людмила Николаевна — врач — пульмонолог высшей квалификационной категории.

Редактор страницы: Санационные методы при заболевания легких: Турбеева Е.А.

***********************

Книга «Болезни органов дыхания Том 1.» (Автор Н.Р. Палеева).

Санационные методы

К бронхологическим методам, применяемым с лечебной целью, относятся так называемые санационные методы, обеспечивающие очищение бронхиального дерева от избыточного содержимого и эндобронхиальное лекарственное воздействие на патологический процесс в легком, а также различные эндоскопические инструментальные лечебные вмешательства в трахее и крупных бронхах.

Эндобронхиальная терапия, получившая название санации бронхиального дерева, включает различные методики, большинство из которых связано с применением бронхоскопии.

Бронхоскопия с лечебной целью может быть выполнена бронхофиброскопом и жестким бронхоскопом как под местным, так и под общим обезболиванием. Для санации бронхиального дерева у взрослых чаще применяют бронхофиброскопию под местной анестезией. Лечебную бронхофиброскопию производят в бронхоскопическом кабинете, но она может быть выполнена и в других помещениях, в том числе при тяжелом состоянии больного непосредственно в палате.

Первым этапом бронхоскопии являются осмотр трахеи и бронхов, установление характера и распространенности воспалительных изменений. Осмотр и санацию бронхов обычно начинают с той стороны, где патология предположительно менее выражена, и завершают зоной основного поражения. Туалет бронхиального дерева включает тщательную последовательную аспирацию содержимого из долевых и сегментарных ветвей, промывание их индифферентным или антисептическим раствором, введение лекарственных веществ.

Аспирацию содержимого бронхов при лечебной бронхофиброскопии производят через инструментальный канал бронхофиброскопа.

В связи с небольшим диаметром инструментального канала аспирация вязкого бронхиального секрета нередко становится возможной только после эндобронхиальной инстилляции изотонического раствора натрия хлорида или другого раствора, которая., производится порционно по 5-20 мл. Общее количество инстиллируемого раствора варьирует от 20 до 100 мл.

Лечебную бронхоскопию жестким бронхоскопом чаще выполняют под наркозом. Аспирацию содержимого бронхов производят с помощью специальных металлических аспирационных трубок, причем минимальную травматизацию слизистой оболочки обеспечивает применение трубок с резиновыми наконечниками. Сравнительно большой диаметр аспирационных трубок позволяет производить удаление секрета практически любой консистенции.

Выбор лекарственных веществ для эндобронхиального введения в конце бронхоскопии зависит от характера воспалительного процесса.

Лечебная катетеризация бронхов для санации одиночных полостей распада или ограниченных очагов воспаления в легком может быть вспомогательной процедурой, выполняемой во время бронхоскопии, или являться самостоятельной лечебной методикой.

Катетеризация бронхов во время бронхофиброскопии осуществляется полиэтиленовым катетером, проводимым через инструментальный канал бронхофиброскопа. Устье сегментарного или субсегментарного бронха, подлежащего катетеризации, определяют на основании уточнения локализации патологического процесса по рентгенограммам грудной клетки с учетом эндоскопических данных (поступление гнойного содержимого из устья бронха, дренирующего полость распада).

При бронхоскопии жестким бронхоскопом катетеризацию бронхов выполняют рентгеноконтрастными сердечными катетерами диаметром 2,5-3,5 мм. Концу катетера.заранее придают изгиб, облегчающий прохождение в нужный сегмент. Для управления катетером и продвижения его в намеченном направлении используют специальные металлические трубки-направители или упругий стальной мандрен, вводимый в просвет катетера.

Самостоятельной лечебной процедурой является катетеризация бронхов, не связанная с лечебной бронхоскопией или завершающаяся оставлением катетера в полости распада на длительный срок.

К таким пособиям, в частности, относится методика проведения сердечного катетера через резиновую трубку диаметром 5-8 мм, вводимую в трахею. Катетер, смоделированный в соответствии с расположением дренирующего бронха, проводят в полость распада под рентгенологическим контролем. Как и при любом способе катетеризации, через катетер осуществляют.промывание бронхов и полостей распада, введение лекарственных веществ. Такая методика проведения катетера может быть использована также для длительной катетеризации полости абсцесса.

Другой разновидностью длительной катетеризации полости абсцесса является метод, связанный с применением бронхофиброскопии [Лукомский Г. И. и др., 1982].

Через инструментальный канал бронхофиброскопа в полость распада под контролем рентгенотелевидения проводят тонкий рентгеноконтрастный направляющий катетер, длина которого вдвое больше длины бронхоскопа. В качестве направителя может быть использован обычный полиэтиленовый катетер с вводимой в него для контрастирования тонкой стальной проволокой или специальный проводник для чрескожной катетеризации сосудов и сердца по методике Сельдингера. Затем бронхофиброскоп извлекают, а по оставленному направляющему катетеру в полость абсцесса проводят рентгеноконтрастный катетер с более широким просветом. Через катетер производят 2-3 раза в сутки аспирацию содержимого, промывание полости абсцесса, введение лекарственных веществ. Длительность пребывания катетера в полости составляет 4-8 дней.

Санацию бронхов с помощью микротрахеоцентеза выполняют через тонкий катетер, вводимый в трахеобронхиальное дерево чрескожно.

В положении больного на спине с валиком под плечами и откинутой головой, в асептических условиях, под местной инфильтрационной анестезией в межхрящевом промежутке ниже перстневидного хряща иглой с диаметром просвета 2 мм прокалывают трахеальную стенку. Катетер диаметром 1,5-2 мм проводят через иглу До бифуркации трахеи.

Удобно производить микротрахеоцентез под контролем бронхофиброскопии. В таких случаях предварительно осуществляют местную анестезию верхних дыхательных путей. После выполнения микротрахеоцентеза в трахею вводят бронхофиброскоп и под визуальным контролем с использованием бронхофиброскопических щипцов направляют катетер в нужный отдел трахеобронхиального дерева.

На шее катетер закрепляют лейкопластырем, накладывают стерильную повязку. Истилляцию лекарственных веществ через катетер производят 2-4 раза в сут.

Эндотрахеальные вливания выполняют через резиновый катетер или с помощью гортанного шприца под местной анестезией. У больных со сниженным кашлевым рефлексом процедуру удается проводить без анестезии.

Катетер вводят в трахею через носовой ход в положении сидя. Направление в трахею достигается отклонением головы назад и оттягиванием языка кпереди. Через голосовые складки катетер проводят при глубоком вдохе.

Эндотрахеальные вливания можно выполнять и гортанным шприцем под контролем непрямой ларингоскопии. Инстилляцию лекарственных веществ производят при наклоне туловища больного в сторону пораженного легкого.

Перед процедурой больной максимально откашливает мокроту с помощью постурального дренажа.

При санации бронхиального дерева эндобронхиально инсталлируют лекарственные вещества, подавляющее патогенную микробную флору, разжижающие бронхиальный секрет, оказывающие противовоспалительное и противоотечное действие на слизистую оболочку, способствующие устранению бронхоспазма.

В качестве противомикробных препаратов часто используют антибиотики, предназначенные для парентерального применения. Выбор антибиотика зависит от чувствительности микробной флоры. Для санации бронхиального дерева на фоне общей антибактериальной терапии эндобронхильно и парентерально назначают одни и те же антибиотики. К числу вводимых эндобронхиально антибиотиков относятся пенициллин и полусинтетические пенициллины, стрептомицин, цефалоспорины (цепорин, кефзол), тетрациклины, левомицетин и др.

Доза инстиллируемого антибиотика аналогична таковой при внутримышечном введении.

Для санации бронхиального дерева используют также анти-септические средства - 0,02 % раствор фурацилина и 0,1% раствор фурагина, обладающие антимикробной бактериостатической и бактерицидной активностью широкого спектра. Антисептические растворы применяют как для промывания бронхов перед введением других лекарственных препаратов, так и в качестве основного действующего вещества.

Сравнительно редко с целью антибактериального действия инстиллируют растворы сульфаниламидов.

Для понижения вязкости бронхиального секрета используют муколитические препараты. К ним относятся, в частности, протеолитические ферменты, катализирующие гидролиз пептидных связей в белках. Для эндобронхиального введения применяют трипсин, химотрипсин, РНКазу, ДНКазу в количестве 25-50 ЕД. На волокна кислого гликопротеина, обусловливающие вязкость слизистого секретр, более сильное литическое действие оказывают трипсин и химотрипсин, на волокна рибонуклеина, содержащиеся в гнойном секрете, - РНКаза, ДНКаза. Протеолитические ферменты обладают также противовоспалительными свойствами, повышают чувствительность микрофлоры к антибиотикам. Перед инстилляцией ферменты растворяют в 3 мл изотонического раствора натрия хлорида.

Выраженное муколитическое влияние оказывает ацетилцистеин. Эндобронхиально вводят 5-10 % раствор ацетилцистеина в количестве 3-10 мл. Препарат содержит свободные сульфгидридные группы, способные разрушать дисульфидные связи гликозаминогликанов, вызывая деполяризацию последних и уменьшение вязкости как слизистого, так и гнойного секрета.

К муколитическим препаратам, применяемым эндобронхиально, относится также бромгексин, вызывающий деполяризацию и расщепление мукопротеиновых и гликозаминогликановых волокон.

Для эндобронхиального применения ампулу, содержащую 2-4 мл препарата, разводят в соотношении 1:1 дистиллированной водой.

Бронхолитическое действие оказывают препараты трех основных групп: аДреномиметические (эфедрин, адреналин, нафтизин и др.), холинолитические (атропин), метилксантины (эуфиллин). Эндобронхиально чаще инстиллируют 1 мл 5 % раствора эфедрина, 1 мл 0,1 % раствора адреналина, 5-10 мл 2,4 % раствора эуфиллина. При введении адреномиметических препаратов^ улучшение бронхиальной проходимости наступает вследствие как бронходилатации, так и уменьшения отека слизистой оболочки бронхов за счет местного сужения сосудов. К эффективным бронхолитическим препаратам, вводимым ингаляционным путем для предупреждения бронхоспазма или борьбы с ним, относятся p-адреномиметические вещества: изадрин (беротек), сальбутамол, алупент (астмомент).

Для борьбы с отеком и воспалением эндобронхиально применяют гормональные препараты, в частности суспензию гидрокортизона в количестве 1-2 мл (25-50 мг).

Показания к применению и выбор методики санации бронхиального дерева при различных заболеваниях легких зависят от вида патологии, характера воспалительных изменений бронхов. Перед назначением курса эндобронхиальной терапии наряду с оценкой особенностей клинического течения заболевания, рентгенологической картины, эффективности медикаментозного лечения обычно проводят лечебно-диагностическую бронхоскопию. Бронхоскопическое исследование позволяет оценить протяженность и выраженность воспалительных изменений бронхиального дерева, составить представление о зоне наибольшего поражения, диагностировать функциональные нарушения типа трахеобронхиальной дискинезии.

Выявление при эндоскопии гнойного воспалительного процесса служит основанием для эндобронхиального применения веществ, оказывающих антимикробное действие. При наличии вязкого слизистого секрета показано применение муколитических средств.

Продолжительность курса санации варьирует от 10 до 20 дней. Лишь у единичных больных с распространенным нагноительным процессом назначают более длительное эндобронхиальное лечение. Частым вариантом эндобронхиальной терапии является сочетание повторных лечебных бронхоскопий с эндотрахеальными вливаниями лекарственных веществ в промежутки времени между бронхоскопиями. Лечебную бронхоскопию Жестким бронхоскопом производят 1-2 раза в нед, иногда более часто - 3-4 раза в нед. В течение курса санации, как правило, выполняют не более 8-10 лечебных бронхоскопий.

У отдельных больных, в частности у больных с повышенной реактивностью трахеобронхиального дерева, проявляющейся массивной гиперсекрецией слизи или бронхоспастической реакцией на эндобронхиальное введение лекарственных веществ, санация бронхиального дерева затруднена и не позволяет достигнуть отчетливого лечебного эффекта. Использование с целью предупреждения бронхоспазма спазмолитических средств, как правило, дает возможность провести полноценную эндобронхиальную терапию.

Противопоказанием к санации бронхиального дерева служат массивное кровохарканье и кровотечение. При лечении больных со стенокардией нецелесообразно применять эндобронхиальные методы до ликвидации явлений коронарной недостаточности, а также у больных гипертонической болезнью с высоким артериальным давлением. Эффективность эндобронхиальной терапии снижается при выраженной сердечно-легочной недостаточности. Однако учитывая, что в таких случаях отягощающим, а нередко ведущим фактором является обструкция бронхов вязким секретом, нельзя считать сердечно-легочную недостаточность абсолютным противопоказанием к санации бронхиального дерева.

Инстилляция сравнительно небольшого количества жидкости является составной частью лечебной бронхоскопии и санации бронхиального дерева, обеспечивая удаление содержимого преимущественно бронхов крупного и среднего калибра. Промывание бронхов, или лечебный БАЛ, является самостоятельной лечебной процедурой, при которой эндобронхиально инстиллируют значительный объем жидкости - от 100 до 1500 мл в бронхи одного легкого. Таким путем достигается вымывание содержимого из всех отделов респираторного тракта, в том числе из мельчайших бронхиальных ветвей и альвеол.

В клинической практике нашли применение две основные разновидности лечебного БАЛ - промывание бронхиального дерева через бронхоскоп и лаваж легкого через интубационную трубку.

Бронхоскопический БАЛ обычно производят через жесткий бронхоскоп под наркозом.

Вентиляцию легких осуществляют инжекционным способом, обеспечивающим адекватный газообмен при открытом тубусе бронхоскопа, что создает более благоприятные условия для выполнения процедуры и сокращает время ее выполнения. Эндобронхиально через катетер диаметром 2,5-3 мм инстиллируют изотонический раствор натрия хлорида, подогретый до температуры тела.

Хорошо зарекомендовало себя последовательное промывание бронхиальных ветвей каждой доли легкого [Лукомский Г. И. и др., 1982]. Введение катетера в нужный долевой или сегментарный бронх выполняют с помощью направителей и других приспособлений. В каждую долю инстиллируют 100-200 мл изотонического раствора натрия хлорида. При некоторых заболеваниях легких (муковисцидоз) для лаважа применяют раствор ацетилцистеина.

Раствор удобно вводить шприцем емкостью 150 мл. Сразу же после инстилляции осуществляют аспирацию поступающего из просветов бронхов раствора и вымываемого бронхиального содержимого. Инстилляцию и аспирацию раствора можно выполнять одновременно. Для этого параллельно с катетером в бронхиальное дерево вводят металлическую трубку - аспиратор. Если при аспирации отмечается значительная примесь бронхиального секрета и мелких слепков бронхов, то лаваж бронхов повторяют. Объем инстиллируемого раствора при бронхоскопическом лаваже бронхов обычно варьирует от 500 до 1500 мл. При обструктивных изменениях в бронхиальном дереве удается аспирировать половину или одну треть вводимого объема жидкости.

Жидкость, инсталлируемая при лаваже бронхов, достигает как мельчайших бронхиальных ветвей, так и альвеол, взаимодействуя с сурфактантным покрытием и альвеолярными клеточными элементами. В результате происходят частичное вымывание сурфактанта, альтерация клеток, развивается интерстициальный отек, снижается растяжимость легких, ухудшаются условия газообмена. Однако возникающие при этом умеренные нарушения функции дыхания исчезают через 24-48 ч.

Лечебный БАЛ нашел применение у больных бронхиальной астмой с приступами удушья и астматическим состоянием, с трудом поддающимися обычному лечению. По мере совершенствования интенсивной лекарственной терапии бронхиальной астмы показания к применению БАЛ возникают все реже.

Поскольку вместе с инсталлируемым раствором в альвеолы попадает бронхиальное содержимое, следует избегать массивного БАЛ при гнойном воспалительном процессе в бронхиальном дереве. При нагноительном процессе, часто наблюдающемся при таких заболеваниях, как муковисцидоз, для предупреждения инфицирования альвеол и обеспечения эффективного удаления бронхиального содержимого более рационально выполнять БАЛ небольшим количеством раствора при однократном введении не более 10-20 мл и общем объеме инсталлируемой жидкости не более 200 мл. Такая методика получила название БАЛ небольшими объемами жидкости, или «щадящего» БАЛ, и нашла применение как при бронхоскопии жестким бронхоскопом, так и в условиях бронхофиброскопии.

Тотальный БАЛ через интубационную трубку производят под наркозом на фоне однолегочной вентиляции (рис. 37.1). Применение двухпросветной интубационной трубки с раздуваемыми резиновыми манжетками обеспечивает герметизацию обоих легких с целью как раздельной вентиляции, так и предупреждения забрасывания инстиллируемой жидкости в бронхиальное дерево противоположной стороны. Для контроля за правильным положением двухпросветной интубационной трубки могут быть использованы данные аускультации легких, рентгенологическое исследование, бронхофиброскоп с диаметром тубуса 3 мм, проводимый через один из просветов трубки.

Вначале производится ИВЛ обоих легких, затем лаважируемое легкое выключают из процесса дыхания. Через просвет интубационной трубки в главный или промежуточный бронх вводят полиэтиленовый катетер диаметром 2,5-3 мм, через который осуществляют инстилляцию подогретого до температуры тела изотонического раствора натрия хлорида. Метод предусматривает тотальное заполнение легкого жидкостью. Это достигается путем одномоментной инстилляции 1000-1500 мл раствора. О тотальном заполнении свидетельствует обратное поступление жидкости через просвет интубационной трубки. Поступающую жидкость вместе с вымываемым бронхоальвеолярным содержимым аспирируют через катетер или просвет интубационной трубки* В отсутствие выраженных обструктивных изменений бронхов аспирируют 90-95 % вводимой жидкости. БАЛ обычно повторяют несколько раз.

Количество промываний легкого в течение одной процедуры и общий объем инстиллируемого раствора устанавливают на основании визуальной оценки жидкости, поступающей из легкого. БАЛ завершают после того, как примесь бронхоальвеолярного содержимого становится незначительной, а поступающая жидкость - почти прозрачной. Объем инстиллируемого изотонического раствора натрия хлорида при тотальном лаваже легкого у отдельных вольных составляет 10 л и более. При хорошей переносимости в течение одного сеанса может быть выполнен последовательный БАЛ обоих легких. Тотальный БАЛ через интубационную трубку обеспечивает вымывание содержимого как бронхов, так и альвеол, является наиболее эффективным способом лечения альвеолярного протеиноза.

Бронхоскопическое удаление инородных тел бронхов. Современный бронхологический инструментарий обеспечивает удаление абсолютного большинства инородных тел бронхов.

Извлечению инородного тела бронхов предшествует эндоскопическое уточнение его разновидности, размеров и расположения. В соответствии с этими данными выбирают способ извлечения и бронхоскопический инструментарий. Бронхоскопия жестким бронхоскопом обладает более высокими возможностями при извлечении инородных тел, чем бронхофиброскопия. Преимущество первого метода в значительной степени связано с обеспечением более надежного захватывания инородного тела щипцами, являющегося одним из основных элементов процедуры. Но и бронхофиброскопический инструментарий, несмотря на относительную миниатюрность, позволяет достаточно прочно захватить и удалить инородные тела бронхов у большинства больных. При подозрении на инородное тело в качестве первого лечебнодиагностического бронхологического исследования показано выполнение бронхофиброскопии под местной анестезией как более легко переносимого и простого метода. Лишь при невозможности бронхофиброскопического извлечения инородного тела целесообразно применение бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом. С самого начала прибегать к этому методу следует у детей младше 10 лет, при крупных инородных телах, осложненных дыхательной недостаточностью и массивным кровохарканьем, при противопоказаниях к применению местной анестезии.

Иногда целесообразно сочетанное применение обоих видов бронхоскопии с проведением бронхофиброскопа через тубус жесткого бронхоскопа, в частности у детей с инородным телом в сегментарных бронхиальных ветвях, труднодоступных для подведения «ригидных» щипцов.

Для удаления инородных тел бронхов с помощью бронхофиброскопа его предпочтительно вводить через ротовую полость. Основным видом инструментария, применяемого для извлечения инородных тел, являются гибкие щипцы диаметром около 2 мм с зубчатыми браншами (типа «аллигатор» и др.). Реже используются щипцы захватывающего типа с зубьевидными или ложкообразными захватами. При округлых инородных телах применяют захваты корзиночного типа, которыми пользуются также в гастроэнтерологии для удаления желчных камней.

Бронхофиброскоп может быть подведен к инородному телу, расположенному в любом отделе бронхиального дерева от трахеи до субсегментарных ветвей.

После захватывания инородного тела щипцами его удаляют вместе с бронхофиброскопом. Визуальный контроль за продвижением инородного тела по бронхам и трахее продолжают непрерывно вплоть до его проведения через голосовую щель и извлечения в ротовую полость.

При извлечении инородного тела через жесткий бронхоскоп чаще всего пользуются щипцами с зубчатыми браншами, которыми удобно извлекать твердые инородные тела плоской или неправильной формы, не склонные к крошению. Для удаления ядра ореха или других предметов, которые при захватывании могут быть легко раздроблены, применяют щипцы с рифлеными окончатыми или сравнительно тонкими уплощенными браншами. С целью извлечения округлых инородных тел используют щипцы со сферическими браншами.

После подведения тубуса бронхоскопа как можно ближе к инородному телу его захватывают щипцами, подтягивают к тубусу и при небольших размерах удаляют через его просвет, а при размерах, превышающих диаметр бронхоскопической трубки, извлекают вместе с бронхоскопом.

Удаление инородных тел органического происхождения, длительно находившихся в бронхиальном дереве, затруднено из-за сопутствующего нагноительного процесса и стеноза бронха вследствие разрастания грануляционной ткани и утолщения слизистой оболочки. Выполнение процедуры облегчается при соблюдении некоторых условий. Следует с осторожностью производить осмотр бронхов и аспирацию бронхиального содержимого, не прикасаясь оптическим телескопом и аспиратором к легко кровоточащей слизистой оболочке во избежание даже небольшого кровотечения. Перед захватыванием инородного тела иногда требуется удалить кусаками прикрывающие его грануляции. Для уменьшения кровоточивости и отека целесообразна обработка слизистой оболочки сосудосуживающими препаратами.

Из ошибок и опасностей, связанных с удалением инородных тел бронхов, прежде всего следует отметить возможность смещения, а иногда заклинивания инородного тела в бронхиальной ветви, после чего бронхоскопическое извлечение становится невозможным. Причиной этого осложнения является надавливание во время захватывания щипцами на инородное тело, слабо фиксированное в просвете бронха. При игольчатой форме тела смещение может сопровождаться внедрением в бронхиальную стенку. Если во время бронхоскопии не удается захватить инородное тело без его смещения, то необходимо изменить способ извлечения.

Другой опасностью является возможность фрагментации хрупкого инородного тела и попадание обломков в мелкие бронхиальные ветви. Этого осложнения можно избежать, если не применять сильного сжатия инородного тела в момент захватывания и использовать щипцы соответствующего типа.

К редким осложнениям принадлежат повреждение бронхиальной стенки и кровотечение. К профилактическим мерам относятся: правильный выбор направления, в котором должно извлекаться инородное тело, исключение захватывания браншами щипцов бронхиальной стенки, постоянный визуальный контроль за продвижением инородного тела.

Временная лечебная окклюзия, или тампонада бронхов. Применяется как метод лечения пиопневмоторакса и остановки массивного легочного кровотечения.

Временная окклюзия бронхов при лечении острого пиопневмоторакса впервые была произведена у детей со стафилококковой деструкцией легких, позднее метод был внедрен при лечении взрослых больных [Путов Н. В. и др., 1981]. Использованию его предшествуют дренирование и активная аспирация содержимого плевральной полости. Показания к окклюзии бронхов возникают при продолжающемся массивном поступлении воздуха по дренажу, препятствующем расправлению легкого.

Бронхоскопическую окклюзию бронхов чаще производят на 2-5-е сутки после дренирования плевральной полости. На протяжении этого времени проводят интенсивную антибактериальную, дезинтоксикационную и общеукрепляющую терапию, позволяющую улучшить состояние больного.

Перед выполнением лечебной окклюзии бронхов необходимо определить локализацию бронхоплевральных свищей. Рентгенография грудной клетки, особенно при наличии рентгенограмм, выполненных до развития пиопневмоторакса, обеспечивает топическую диагностику свищей на основании локализации ограниченного деструктивного процесса в определенном участке легкого. Инструментальные способы диагностики с использованием бронхоскопии основаны на прекращении поступления воздуха в плевральную полость при тампонаде соответствующих бронхов, а также на выявлении бронхоплеврального сообщения путем введения окрашенной жидкости или газа эндобронхиально либо в плевральную полость.

Лечебную окклюзию бронхов поролоновой губкой выполняют во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом, предпочтительно в условиях рентгенобронхологического кабинета.

Тубус бронхоскопа устанавливают над устьем бронха, подлежащего окклюзии. Содержимое бронхов тщательно аспирируют, в зону окклюзии инстиллируют раствор антибиотика. Диаметр губки-блокатора должен в 2-3 раза превышать диаметр окклюзируемого бронха, чтобы не наступило ее смещения в другие отделы бронхиального дерева. С целью рентгенологического контроля за положением губки ее обрабатывают жидким или порошкообразным контрастным веществом. Поролоновую губку скручивают, захватывают щипцами и через тубус бронхоскопа вводят в просвет бронха, в котором она расправляется и плотно прилегает к бронхиальным стенкам.

Об успешной окклюзии бронхов свидетельствует прекращение поступления воздуха из полости плевры по дренажу. Рентгеноскопически можно наблюдать уменьшение остаточной плевральной полости и расправление легкого.

Продолжительность пребывания поролоновой губки в просвете бронха составляет 7-10 дней. При повторной бронхоскопии ее извлекают, аспирируют секрет, скопившийся дистальнее зоны окклюзии, и промывают бронхиальные ветви антисептическим раствором. Если во время бронхоскопии или в ближайшие дни возобновляется поступление воздуха в плевральную полость, то может быть произведена повторная окклюзия бронхов свежей поролоновой губкой.

В результате комплексного лечения с применением временной окклюзии заживление бронхоплевральных свищей и ликвидация плевролегочного нагноительного процесса достигаются у 80 % больных. Иногда сохраняется небольшая «сухая» остаточная плевральная полость. Достижение лечебного эффекта затруднено при большой протяженности деструктивного процесса и прогрессирующем его характере, при множественных бронхоплевральных свищах в различных долях легкого.

Осложнения временной окклюзии бронхов наблюдаются сравнительно редко. К ним относятся увеличение протяженности деструктивного процесса в легком, продвижение поролоновой губки в субсегментарные бронхиальные ветви и невозможность ее извлечения, миграция губки в проксимальные дыхательные пути, развитие воспаления бронхиальной стенки с вовлечением в процесс хрящей и формированием в отдаленные сроки рубцового стеноза бронха, образование бронхоэктазов.

Показанием к лечебной бронхоскопической тампонаде бронхов является массивное легочное кровотечение, угрожающее развитием асфиксии и не поддающееся остановке с помощью интенсивной медикаментозной терапии. Тампонада бронхов может быть элементом подготовки к срочному оперативному вмешательству (резекция легких) или являться самостоятельным способом лечения, в частности при наличии противопоказаний к хирургическому лечению.

Методика тампонады бронхов при массивном легочном кровотечении в основном аналогична временной эндобронхиальной окклюзии при пиопневмотораксе. Процедуру выполняют во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом в эндоскопическом кабинете или операционной. Бронхоскопическое исследование начинают с аспирации крови из дыхательных путей и визуальной диагностики. После уточнения долевой локализации источника кровотечения поролоновую губку вводят в долевой бронх.

Продолжительность тампонады бронхов при массивном легочном кровотечении составляет 24-48 ч. Губку извлекают при повторной бронхоскопии. Возобновление кровотечения после удаления губки и аспирации свертков крови наблюдается’ у трети больных, являясь основанием для повторной тампонады бронха.

Приблизительно столь же эффективна временная окклюзия бронхов зондом Фогерти, которую выполняют во время бронхо-фиброскопии под местной анестезией.

К эндобронхиальным хирургическим вмешательствам относятся бронхоскопические инструментальные лечебные манипуляции, направленные на устранение патологических образований трахеи и бронхов. Такие вмешательства могут быть самостоятельным видом радикального лечения некоторых заболеваний органов дыхания или служить вспомогательной процедурой, облегчающей подготовку к реконструктивным и другим трансторакальным операциям, а также являться паллиативным лечебным воздействием, направленным на восстановление проходимости воздухоносных путей при неоперабельных новообразованиях.

Наряду с традиционными эндобронхиальными оперативными вмешательствами, основанными на механическом воздействии с помощью щипцов или других специальных инструментов, в клинической практике нашли применение методики, связанные с использованием электрохирургической, криохирургической, лазерной и другой специальной аппаратуры.

Бронхоскопические оперативные вмешательства, условно называемые механическими, производят с помощью обычного эндоскопического инструментария и некоторых приспособлений, облегчающих выполнение эндобронхиальных лечебных манипуляций. Основными назначениями оперативных вмешательств являются удаление новообразований и устранение стенозов дыхательных путей.

Наиболее распространенным способом удаления патологических образований трахеи и бронхов является скусывание их биопсийными или иными щипцами во время бронхоскопии жестким бронхоскопом. Сравнительно малый объем ткани (около 3 мм), который может быть захвачен браншами щипцов, позволяет с помощью этого способа удалять относительно небольшие доброкачественные опухоли, грануляционные разрастания. Путем скусывания предпочтительно удалять новообразования, имеющие хорошо сформированную ножку [Перельман М. И. и др., 1981 ].

Механическое удаление производят в отсутствие выраженной кровоточивости ткани опухоли. Если во время скусывания одного из фрагментов ткани возникает умеренное кровотечение, то манипуляцию прекращают и принимают меры, направленные на остановку кровотечения, используя как лекарственные препараты, так и тампонаду бронхов.

Так называемые механические оперативные вмешательства редко выполняют при крупных опухолях трахеи и бронхов в качестве радикального вида лечения. У отдельных больных успешное удаление крупных новообразований достигается путем использования специальных приемов (срезание ткани стальной петлей для полипэктомии или осторожное отслаивание опухоли от бронхиальной стенки тубусом бронхоскопа).

Бужирование чаще применяется для лечения рубцовых стенозов трахеи и главных бронхов. Лечебной бронхоскопии с бужированием предшествует диагностическая бронхофиброскопия, во время которой определяются вид и степень стеноза, его протяженность, исключается неопластический процесс.

Наиболее благоприятные условия для бужирования создаются во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом.

Расширение стенозированных дыхательных путей осуществляют тубусом бронхоскопа или специальными бужами. Самым ответственным моментом является первоначальное продвижение тубуса бронхоскопа или дилататора через участок стеноза. Для предупреждения разрыва трахеобронхиальной стенки диаметр тубуса бронхоскопа не должен превышать диаметр дыхательных путей в месте стеноза более чем на 2 мм. Бронхоскопическую трубку целесообразно вводить вращательно-поступательными движениями, которые оказывают более щадящее воздействие на ткани, чем прямое продвижение инструмента. Прилагать усилие можно только в случае уверенности, что тубус бронхоскопа двигается точно через просвет суженного бронха, а не смещается в сторону от него. Визуальный контроль через бронхоскопическую трубку в момент бужирования обеспечивает придание ей правильного направления.

После проведения через участок стеноза бронхоскоп извлекают и бужирование повторяют бронхоскопической трубкой большего диаметра. Для рассечения очень плотной рубцовой ткани при стенозах мембранозного типа, не поддающихся бужированию, нашли применение специальные длинные ножи.

Бужирование у большинства больных позволяет быстро устранить рубцовый стеноз трахеи и бронхов, ликвидировать вентиляционные нарушения. Однако стойкое восстановление нормальной проходимости дыхательных путей достигается редко. Как правило, через 3-6 нед или ранее наблюдается рецидив стеноза, требующий повторных лечебных манипуляций.

До внедрения в клиническую практику криохирургических и лазерных эндоскопических вмешательств бужирование было одним из ведущих бронхоскопических методов лечения стенозов трахеи и бронхов. В последние годы оно стало применяться реже и служит в основном вспомогательной лечебной процедурой при подготовке к другим видам эндобронхиальной хирургии.

Бронхоскопическое бужирование, выполняемое без строгого соблюдения методических требований, может осложниться разрывом или перфорацией трахеобронхиальных стенок, а также кровотечением.

Эндоскопические электрохирургические вмешательства выполняются с помощью двух основных методик: электроэксцизии опухоли диатермической петлей и электрокоагуляции ткани одиночным электродом - электроножом.

К аппаратуре относится электрохирургический блок с источником питания, генерирующим высокочастотный диатермический ток в непрерывном режиме резания или в.прерывистом режиме коагуляции, а также в смешанном режиме. К этому блоку присоединяют два электрода: пассивный - металлическую пластину с большой контактной поверхностью, прикрепляемую к бедру или голени больного, и активный - один из эндоскопических инструментов (диатермическая петля или электронож).

В соответствии с соотношением площадей контактных поверхностей электродов мощность тока ничтожно мала в зоне пассивного электрода и очень высока в области активного электрода. Теплообразование, возникающее при взаимодействии активного электрода с тканью, достаточно для ее рассечения или деструкции.

Бронхоскопические электрохирургические вмешательства производят во время бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом или во время бронхофиброскопии под местной анестезией. Диатермическую петлю вводят эндобронхиально внутри фторо-пластового катетера через инструментальный канал бронхофиброскопа. При бронхоскопии жестким бронхоскопом с этой целью может быть применен также специальный направитель, совмещенный с оптическим телескопом.

Диатермическую петлю набрасывают на новообразование трахеи или бронхов, подводят под его основание и затягивают. Затем на фоне действия диатермического тока петлю медленно втягивают в катетер и осуществляют электроэксцизию опухоли.

При слишком быстром втягивании диатермической петли в катетер может наступить механическое пересечение основания опухоли без электрокоагуляции, сопровождающееся кровотечением.

В зависимости от размеров новообразования продолжительность электроэксцизии варьирует от 3 до 80 с. Извлечение опухоли из трахеобронхиального дерева осуществляют с помощью щипцов для удаления инородных тел бронхов. Если размеры опухоли превышают диаметр тубуса жесткого бронхоскопа, то после захватывания щипцами ее извлекают вместе с бронхоскопом.

Удаление опухоли трахеи и бронхов может быть достигнуто в результате как однократного, так и повторного электроиссечения ткани диатермической петлей. Одномоментное удаление возможно при расположении опухоли в трахее или одном из бронхиальных стволов. При распространении на две и более бронхиальные ветви опухоль удаляют по частям. Применение вмешательств с помощью диатермической петли ограничено в основном невозможностью ее подведения под основание опухоли. Такая ситуация может возникнуть при опухоли на широком основании и инвазивном ее росте, плотной обтурации опухолью просвета бронха, расположении новообразования в труднодоступных сегментарных ветвях.

Возможности электрохирургических оперативных вмешательств с помощью электроножа ниже, чем при использовании диатермической петли. Электродеструкция крупных новообразований требует многочисленных воздействий на протяжении многократных бронхоскопий. Этот метод чаще применяется для электрокоагуляции грануляционных разрастаний, кровоточащих участков бронхиальных стенок, слизистой оболочки бронхиальных свищей и значительно реже используется для восстановления проходимости дыхательных путей при неоперабельных новообразованиях [Овчинников А. А., Филиппов М. В., 1984].

Криохирургические оперативные вмешательства выполняют путем воздействия на ткани сверхнизкой температуры (-160-180 °С). Криовоздействие через бронхоскоп осуществляют специальным криозондом диаметром около 5 мм, длиной 50-55 см. Охлаждения до сверхнизких температур достигают жидким азотом, циркулирующим внутри криозонда по системе тонких трубок. Сверхнизкая температура создается только на концевой части криоинструмента; остальная поверхность криозонда не подвергается существенному охлаждению благодаря вакуумной термоизоляции.

Криохирургические вмешательства выполняются во время бронхоскопии жестким бронхоскопом.

Криозонд проводят в трахеобронхиальное дерево через бронхоскопическую трубку. После соприкосновения наконечника с патологическим образованием трахеи или бронхов в криоинструмент подается жидкий азот и осуществляется замораживание ткани до -160 °С. Продолжительность однократного криовоздействия 1-3 мин. Затем подача жидкого азота прекращается и наступает оттаивание крионаконечника и замороженной ткани. После этого криозонд может быть извлечен или перемещен на другой участок ткани.

Объем замороженной ткани зависит от продолжительности криовоздействия. При значительных размерах патологического образования криоаппликацию на различных участках ткани повторяют несколько раз во время одной процедуры.

Замораживание ткани сопровождается ее некрозом с последующим отторжением и регенерационным процессом. В результате криовоздействия достигается уменьшение размеров патологических образований вплоть до полного обратного развития.

В клинической практике нашли применение два варианта криохирургических вмешательств: криодеструкция, при которой осуществляется только замораживание ткани, и криорезекция, включающая криовоздействие с последующим механическим удалением некротизированной ткани биопсийными щипцами или другим инструментарием.

Эндобронхиальное криохирургическое вмешательство проводится для частичного удаления неоперабельных опухолей трахеи и бронхов с восстановлением проходимости дыхательных путей, а также с целью лечения рубцовых стенозов трахеи, ларинго-трахеального папилломатоза [Русаков М. А., 1981; Sanderson D. et al„ 1981].

К осложнениям криодеструкции относятся усиление степени стенозирования трахеи и бронхов вследствие отека ткани в зоне криовоздействия, кровотечение.

Бронхологическое применение высокоэнергетических лазеров позволило разработать принципиально новый вид эндобронхиальной хирургии - бесконтактные оперативные вмешательства, при которых разрушение’ патологических образований трахеи и бронхов происходит под воздействием лазерного излучения.

Внедрение эндобронхиальной лазерной хирургии в клиническую практику стало возможным после того, как были сконструированы специальные световоды и фокусирующие системы, обеспечивающие передачу к месту воздействия излучения высокой плотности мощности.

При бронхоскопических оперативных вмешательствах применяются два основных типа лазеров: СОг-лазер и неодимовый иттрий-алюминиево-гранатовый (ИАГ) лазер. С целью передачи излучения С02 лазера используются ригидные световоды, поэтому его применение ограничивается бронхоскопией жестким бронхоскопом. Более универсальны эндоскопические лазерные установки с неоди-мовым ИАГ-лазером, луч которого передается по гибкому волоконному световоду.

Лазерные оперативные вмешательства с помошью неодимового ИАГ-лазера мощностью 100-120 Вт выполняют во время как бронхофиброскопии под местной анестезией, так и бронхоскопии жестким бронхоскопом под наркозом. Использование моноволоконных кварцевых световодов диаметром 0,5 мм позволяет создавать в пятне излучения диаметром 1 -1,5 мм плотность мощности до 100 Вт/мм2.

Волоконный световод вмонтирован во фторопластовый катетер диаметром около 2 мм с сохранением пространства для подачи сжатого воздуха.

Излучение неодимового ИАГ-лазера с длиной волны 1060 нм находится в инфракрасной части спектра и не воспринимается глазом. Для наведения лазерного излучения в эндоскопическую лазерную установку включен низкоэнергетический гелий-неоновый лазер с длиной волны 630 нм, придающий лучу окраску красного цвета. Луч гелий-неонового лазера проецируется на трахеобронхиальные стенки в виде красного пятна диаметром около 1 мм.

При бронхофиброскопической методике катетер с моноволоконным световодом вводят в трахеобронхиальное дерево через инструментальный канал бронхофиброскопа. Волоконный световод устанавливают на расстоянии около 0,5 см от патологического образования трахеи или бронхов. Ориентируясь на расположение красного пятна луча гелий-неонового лазера, выбирают место воздействйя. Лазерную фотокоагуляцию осуществляют под непрерывным визуальным контролем. Излучение неодимового ИАГ-лазера подается сериями импульсов (5-6) с кратковременными перерывами между сериями.

Общая продолжительность воздействия зависит от размеров патологического образования. В течение одной процедуры может потребоваться применение 200 и более импульсов. Изменение направления лазерного луча с целью фотокоагуляции различных участков ткани осуществляется путем изгиба дистального конца бронхофиброскопа. В момент лазерного вмешательства дистальный конец световода подвергают обдуву сжатым воздухом с целью защиты от продуктов, образовавшихся при взаимодействии с тканями.

Под воздействием излучения неодимового ИАГ-лазера в ткани образуются три зоны, различающиеся по повышению температуры и характеру повреждения клеток. В первой зоне температура возрастает до 900-1000 °С, что вызывает испарение и извержение частиц ткани, образование аморфной массы коагулированных клеток. Вторая зона характеризуется повышением температуры до 300-400 °С, испарением части тканевой жидкости с развитием многочисленных полостей, выстланных сжатыми и деформированными клетками. В третьей зоне ткани, где температура достигает 70-200 °С, происходит коагуляционный некроз без парообразования. Из-за кратковременности лазерного импульса мгновенно выделяющееся тепло не успевает распространиться за пределы зоны облучения и в отличие от других термических поражений ожоги под воздействием импульсов лазеров имеют резкую границу между пораженной и окружающей интактной тканью [Гамалея Н. Ф., 1981]. Очевидно, поэтому лазерные оперативные вмешательства сопровождаются незначительной реакцией тканей, окружающих зону фотокоагуляции.

Эндоскопически лазерная фотокоагуляция проявляется возникновением кратерообразных углублений ткани с белесоватой или коричневатой поверхностью. В течение одного импульса коагулируется около 3 мм2 ткани. Одновременно происходит выделение дыма, выходящего при выдохе из дыхательных путей. При многократном импульсном лазерном воздействии наступает обугливание (карбонизация) ткани.

Бронхоскопические лазерные оперативные вмешательства зарекомендовали себя как эффективный способ лечения новообразований трахеи и бронхов. При доброкачественных опухолях лазерная фотокоагуляция позволяет полностью удалить новообразование с эндобронхиальным ростом и является радикальным видом лечения.

При злокачественных новообразованиях эндоскопическое воздействие высокоэнергетическим лазером обычно используют в качестве паллиативного вмешательства в случаях наличия противопоказаний к трансторакальному хирургическому лечению для удаления эндобронхиальной части опухоли и восстановления проходимости дыхательных путей. С помощью лазерной фотокоагуляции полной деструкции опухоли можно достигнуть лишь на стадии неинвазивного роста бронхогенного рака.

Эндобронхиальное лазерное воздействие позволяет разрушить не только опухолевую, но и рубцовую ткань и устранить рубцовый стеноз трахеи и бронхов. Лазерные вмешательства наиболее эффективны при рубцовых стенозах протяженностью не более 1 см.

Бронхоскопическая лазерная фотокоагуляция позволяет ликвидировать кровоточащие образования трахеи и бронхов, грануляционные и папилломатозные разрастания, а также некоторые другие виды патологии.

Осложнения при бронхоскопических лазерных вмешательствах (перфорация стенки трахеи или бронха, кровотечение, асфиксия, остановка сердца) встречаются редко. Осложнения с летальным исходом развиваются в основном у больных с неоперабельными злокачественными новообразованиями, находящихся в тяжелом состоянии, и встречаются с частотой до 0,3 % .

Лечебная торакоскопия. Применяется с целью санации плевральной полости и для выполнения различных эндоплевральных оперативных вмешательств. Наряду с инструментарием, используемым при диагностической торакоскопии, для лечебных эндоплевральных манипуляций применяют специальный операционный торакоскоп, в котором тубус совмещен с оптическим телескопом и имеет инструментальный канал.

Основными показаниями к торакоскопической санации плевральной полости является острая и хроническая эмпиема плевры.

Лечебную торакоскопию обычно выполняют под наркозом, но в случае отсутствия выраженной дыхательной недостаточности она может быть произведена и под местной анестезией.

Место торакоцентеза зависит от расположения полости эмпиемы и устанавливается предварительно на основании рентгенологических данных. После введения торакоскопа производят визуальную оценку состояния плевральной полости, выявляют внутриплевральные сращения, наложения фибрина, признаки бронхоплевральных свищей, оценивают степень коллапса легкого. Санация полости эмпиемы включает аспирацию гнойного содержимого, удаление фибринозных и гнойно-некротических налетов, разрушение рыхлых сращений, промывание антисептическим раствором.

Возможности эндоплевральных лечебных вмешательств расширяются при одновременном введении в плевральную полость через дополнительное торакоцентезное отверстие второго тубуса торакоскопа, предназначенного для эндоскопических инструментов или оптических телескопов. Для удаления гнойно-фиброзных наложений и разъединения сращений используют специальные зонды и щипцы, с этой же целью, а также для промывания полости эмпиемы - ультразвуковую аппаратуру [Кабанов А. Н., Ситко Л. А., 1985]. Лечебную торакоскопию завершают введением через торакоскоп резиновой дренажной трубки.

К разновидностям санационной торакоскопии относится лечебная торакоабсцессоскопия. Этот метод применяется при крупных абсцессах легких с секвестрацией легочной ткани.

Место торакоцентеза располагается над центром полости распада, а при наличии жидкого содержимого - на 1-2 см выше его уровня. После, контрольной пункции абсцесса в намеченной точке иглу не извлекают; она служит ориентиром для введения рядом с ней троакара. После осмотра полости абсцесса и аспирации жидкого содержимого осторожно удаляют секвестрированную некротическую легочную ткань и сгустки фибрина. Возникающее при этом небольшое кровотечение останавливают электрокоагуляцией. Процедуру завершают промыванием полости распада антисептическим раствором и торакоскопическим дренированием.

Торакоабцессоскопия позволяет ликвидировать явления интоксикации и ускоряет заживление очага деструкции в легком.

Лечебную торакоскопию используют для санации плевральной полости при травматическом гемотораксе, производя удаление как несвернувшейся крови, так и свертков ее [Авилова О. М. и др., 1986].

К первым торакоскопическим оперативным вмешательствам относится торакоакустика - пережигание плевральных сращений у больных туберкулезом легких, внедренное Якобеусом в 1913 г. В последние годы оперативную торакоскопию наиболее часто выполняют при спонтанном пневмотораксе с целью разрушения булл и сращений, являющихся причиной пневмоторакса и препятствующих расправлению легкого. В качестве торакоскопического операционного инструментария используют диатермокоагулятор и лазерную аппаратуру.

При электрохирургических вмешательствах диатермокоагулятор вводят через инструментальный канал операционного торакоскопа или с помощью дополнительно торакоцентеза. После подведения диатермокоагулятора к поверхности буллы осуществляют электродеструкцию ее стенки с коагуляцией основания. Аналогичным путем разрушают одиночные сращения между париетальной и висцеральной плеврой.

Для лазерных оперативных вмешательств, как и при бронхоскопии, используют неодимовый ИАГ-лазер с гибким моноволоконным световодом. В плевральную полость световод проводят с помощью специального направителя. С этой целью могут быть использованы также фиброэндоскопы. Направляя луч лазера на буллезное образование, производят фотокоагуляцию его стенки и основания.

Диатермическую и лазерную коагуляцию применяют при хорошо доступных средних и мелких буллах, стремясь к облитерации их. Преимуществами лазерной фотокоагуляции являются бесконтактное разрушение булл, возможность точной дозировки энергии и постоянного визуального контроля за процессом коагуляции.

Для образования сращений в плевральной полости и предупреждения рецидива заболевания может быть применено эндоплевральное распыление талька или других химических веществ.

К более редким торакоскопическим оперативным вмешательствам относятся париетальная плеврэктомия, внутриплевральная симпатэктомия и ваготомия, удаление инородных тел и др.